Akkermansia mucinifila — роль у порушенні метаболізму
DOI:
https://doi.org/10.30978/UTJ2020-4-55Ключові слова:
Akkermansia muciniphila, метаболічно асоційовані захворювання, поліфеноли, позаклітинні везикули.Анотація
Наголошено на важливості ролі кишкового мікробіому в регуляції метаболізму хазяїна. Наведено сучасні уявлення про роль одного з представників кишкового мікробіому людини –Akkermansia muciniphila (філ Verrucomicrobia) у патогенетичних механізмах хронічних неінфекційних захворювань, які асоціюються з порушеннями метаболізму. Показано вікові і анатомічні особливості рівня колонізації Akkermansia muciniphila. Описано її муциндеградирувальні властивості та їх роль у продукції коротколанцюгових жирних кислот. Показано можливість Akkermansia muciniphila створювати в екосистемі кишечника метаболічні перехресні взаємодії, що значно впливає на склад мікробіому кишечника. Цей мікроорганізм виробляє екстрацелюлярні везикули, які впливають на імунні реакції в організмі хазяїна та бар’єрну функцію кишечника. Продемонстровано зв’язок між рівнем їх вироблення і масою тіла та толерантністю до глюкози. Наведено факти участі білків зовнішньої мембрани Akkermansia muciniphila в модуляції імунних реакцій. Звернено увагу на здатність впливу білків зовнішньої мембрани на імунні реакції навіть у пастеризованих Akkermansia muciniphila, яка більше виражена, ніж у живих бактерій, що відкриває перспективи для розроблення нових лікарських засобів на їх основі. Показано, що автоклавування усуває вплив на організм білків поверхневої мембрани. Наведено дані щодо зміни рівня колонізації Akkermansia muciniphila за наявності метаболічно асоційованих захворювань як у тварин, так і у людей. Описано результати досліджень застосування Akkermansia muciniphila в експериментальних моделях для лікування метаболічно асоційованих захворювань і перспективи її використання як пробіотичного препарату нового рівня. Наведено дані щодо безпечності її застосування. Показано роль поліфенолів у потенціюванні посилення колонізації Akkermansia muciniphila.Посилання
Alhawi M., Stewart J., Erridge C. et al. Bacteroides fragilis signals through Tolllike receptor (TLR) 2 and not through TLR4 // J. Med. Microbiol. — 2009. — Vol. 58 (Pt 8). — P. 1015 — 1022. doi: 10.1099/jmm.0.0099360.
Anhê F. F., Marette A. A microbial protein that alleviates metabolic syndrome // Nat. Med. — 2017. — Vol. 23. — P. 11 — 12. doi: 10.1038/nm.4261.
Anhê F. F., Roy D., Pilon G. et al. A polyphenolrich cranberry extract protects from dietinduced obesity, insulin resistance and intestinal inflammation in association with increased Akkermansia spp. population in the gut microbiota of mice // Gut. — 2015. — Vol. 64 (6). — P. 872 — 883. doi: 10.1136/gutjnl2014307142.
Anhê F. F., Schertzer J. D., Marette A. Bacteria to alleviate metabolic syndrome // Nat. Med. — 2019. — Vol. 25. — P. 1031 — 1033. doi: 10.1038/s4159101905161.
Anonye B. O. Commentary: dietary polyphenols promote growth of the gut bacterium Akkermansia muciniphila and attenuate highfat dietinduced metabolic syndrome // Front. Immunol. — 2017. — Vol. 8. — P. 850. doi: 10.3389/fimmu.2017.00850.
Baldwin J., Collins B., Wolf P. G. et al. Table grape consumption reduces adiposity and markers of hepatic lipogenesis and alters gut microbiota in butter fatfed mice // J. Nutr. Biochem. — 2016. — Vol. 27. — P. 123 — 135. doi: 10.1016/j.jnutbio.2015.08.027.
Bannerman P., Guo F., Chechneva O. et al. Brain Nat8l knockdown suppresses spongiform leukodystrophy in an aspartoacylasedeficient canavan disease mouse model // Mol. Ther. — 2018. — Vol. 26. — P. 793 — 800. doi: 10.1016/j.ymthe.2018.01.002м.
Barton W., Penney N. C., Cronin O. et al. The microbiome of professional athletes differs from that of more sedentary subjects in composition and particularly at the functional metabolic level // Gut. — 2018. — Vol. 67. — P. 625 — 633.
Belzer C., Chia L. W., Aalvink S. et al. Microbial metabolic networks at the mucus layer lead to dietindependent butyrate and vitamin B12 production by intestinal symbionts // mBio. — 2017. — Vol. 8 (5). — e00770 — 17. doi: 10.1128/mBio.0077017.
Belzer C., De Vos W. M. Microbes inside–from diversity to function: the case of Akkermansia // ISME J. — 2012. — Vol. 6. — P. 1449 — 1458. doi: 0.1038/ismej.2012.6.
Biagi E., Franceschi C., Rampelli S. et al. Gut microbiota and extreme longevity // Curr. Biol. — 2016. — Vol. 26. — P. 1480 — 1485. doi: 10.1016/j.cub.2016.04.016.
Boulangé C. L., Neves A. L., Chilloux J. et al. Impact of the gut microbiota on inflammation, obesity, and metabolic disease // Genome Med. — 2016. — Vol. 8 (1). — P. 42.
Brodmann T., Endo A., Gueimonde M. et al. Safety of novel microbes for human consumption: practical examples of assessment in the European Union // Front. Microbiol. — 2017. — Vol. 8. — P. 1725. doi: 10.3389/fmicb.2017.01725.
Cani P. D. Human gut microbiome: hopes, threats and promises // Gut. — 2018. — Vol. 67 (9). — P. 1716 — 1725. doi: 10.1136/gutjnl2018316723.
Сani P. D., de Vos W. M. Nextgeneration beneficial microbes: The case of Akkermansia muciniphila // Front. Microbiol. — 2017. — Vol. 8. — P. 1765. doi: 10.3389/fmicb.2017.01765.
Cani P. D., Plovier H., Van Hul M. et al. Endocannabinoids — at the crossroads between the gut microbiota and host metabolism // Nat. Rev. Endocrinol. — 2016. — Vol. 12. — P. 133 — 143. doi: 10.1038/nrendo.2015.211.
Carding S., Verbeke K., Vipond D. T. et al. Dysbiosis of the gut microbiota in disease // Microb. Ecol. Health Dis. — 2015. — Vol. 26. — P. 26191. doi: 10.3402/mehd.v26.2619.
Carmody R. N., Gerber G. K., Luevano J. M. et al. Diet dominates host genotype in shaping the murine gut microbiota // Cell. Host Microbe. — 2015. — Vol. 17. — P. 72 — 84.
Chelakkot C., Choi Y., Kim D.K. et al. Akkermansia muciniphiladerived extracellular vesicles influence gut permeability through the regulation of tight junctions // Exp. Mol. Med. — 2018. — Vol. 50. — e450. doi: 10.1038/emm.2017.282.
Chia L. W., Hornung B. V.H., Aalvink S. et al. Deciphering the trophic interaction between Akkermansia muciniphila and the butyrogenic gut commensal Anaerostipes caccae using a metatranscriptomic approach // Antonie Van Leeuwenhoek. — 2018. — Vol. 111. — P. 859 — 873. doi: 10.1007/s104820181040x.
Clemente J. C., Ursell L. K., Parfrey L. W., Knight R. The impact of the gut microbiota on human health: an integrative view // Cell. — 2012. — Vol. 148. — P. 1258 — 1270.
Collado M. C., Derrien M., Isolauri E. et al. Intestinal integrity and Akkermansia muciniphila, a mucindegrading member of the intestinal microbiota present in infants, adults, and the elderly // Appl. Environ Microbiol. — 2007. — Vol. 73. — P. 7767 — 7770.
Collado M. C., Isolauri E., Laitinen K., Salminen S. Distinct composition of gut microbiota during pregnancy in overweight and normalweight women // Am. J. Clin. Nutr. — 2008. — Vol. 88. — P. 894 — 899. doi: 10.1093/ajcn/88.4.894.
Dao M. C., Everard A., AronWisnewsky J. et al. Akkermansia muciniphila and improved metabolic health during a dietary intervention in obesity: relationship with gut microbiome richness and ecology // Gut. — 2016. — Vol. 65. — P. 426 — 436.
de la CuestaZuluaga J., Mueller N. T., CorralesAgudelo V. et al. Metformin is associated with higher relative abundance of mucindegrading Akkermansia muciniphila and several shortchain fatty acidproducing microbiota in the gut // Diabetes Care. — 2017. — Vol. 40 (1). — P. 54 — 62. doi: 10.2337/dc161324.
Depommier C., Everard A., Druart C. et al. Supplementation with Akkermansia muciniphila in overweight and obese human volunteers: a proofofconcept exploratory study // Nat. Med. — 2019. — Vol. 25. — P. 1096 — 1103. doi: 10.1038/s4159101904952.
Derrien M., Collado M. C., BenAmor K. et al. The Mucin degrader Akkermansia muciniphila is an abundant resident of the human intestinal tract // Appl. Environ. Microbiol. — 2008. — Vol. 74. — P. 1646 — 1648. doi: 10.1128/AEM.0122607.
Dingemanse C., Belzer C., Van Hijum S. A. et al. Akkermansia muciniphila and Helicobacter typhlonius modulate intestinal tumor development in mice // Carcinogenesis. — 2015. — Vol. 36. — P. 1388 — 1396. doi: 10.1093/carcin/bgv120.
Duranti S., Ferrario C., Van Sinderen D. et al. Obesity and microbiota: an example of an intricate relationship // Genes Nutr. — 2017. — Vol. 12. — P. 18. doi: 10.1186/s1226301705662.
Earley H., Lennon G., Balfe A. et al. A preliminary study examining the binding capacity of Akkermansia muciniphila and Desulfovibrio spp., to colonic mucin in health and ulcerative colitis // PLoS ONE. — 2015. — Vol. 10. — e0135280.
Everard A., Belzer C., Geurts L. et al. Crosstalk between Akkermansia muciniphila and intestinal epithelium controls dietinduced obesity // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. — 2013. — Vol. 110. — P. 9066 — 9071. doi: 10.1073/pnas.1219451110.
Forslund K., Hildebrand F., Nielsen T. et al. Disentangling type 2 diabetes and metformin treatment signatures in the human gut microbiota // Nature. — 2015. — Vol. 528. — P. 262 — 266.
Fukui H. Role of gut dysbiosis in liver diseases: What have we learned so far? // Diseases. — 2019. — Vol. 7 (4). — P. 58. doi: 10.3390/diseases7040058.
Ganesh B. P., Klopfleisch R., Loh G., Blaut M. Commensal Akkermansia muciniphila exacerbates gut inflammation in Salmonella typhimuriuminfected gnotobiotic mice // PLoS One. — 2013. — Vol. 8. — e74963. doi: 10.1371/journal.pone.0074963.
Geerlings S. Y., Kostopoulos I., De Vos W. M., Belzer C. Akkermansia muciniphila in the human gastrointestinal tract: when, where, and how? // Microorganisms. — 2018. — Vol. 6 (3). — P. 75. doi: 10.3390/microorganisms6030075.
Gomes A. C., Hoffmann C., Mota J. F. The human gut microbiota: Metabolism and perspective in obesity // Gut Microbes. — 2018. — Vol. 9. — P. 308 — 325.
GomezGallego C., Pohl S., Salminen S. et al. Akkermansia muciniphila: a novel functional microbe with probiotic properties // Benef. Microbes. — 2016. — Vol. 7. — P. 571 — 584.
Grander C., Adolph T. E., Wieser V. et al. Recovery of ethanolinduced depletion ameliorates alcoholic liver disease // Gut. — 2018. — Vol. 67 (5). — P. 891 — 901. doi: 10.1136/gutjnl2016313432.
Greer R. L., Dong X., Moraes A. C. et al. Akkermansia muciniphila mediates negative effects of IFN gamma on glucose metabolism // Nat. Commun. — 2016. — Vol. 7. — P. 13329.
Hänninen A., Toivonen R., Pöysti S. et al. Akkermansia muciniphila induces gut microbiota remodelling and controls islet autoimmunity in NOD mice // Gut. — 2018. — Vol. 67 (8). — P. 1445 — 1453. doi: 10.1136/ gutjnl2017314508.
Henning S. M., Summanen P. H., Lee R. P. et al. Pomegranate ellagitannins stimulate the growth of Akkermansia muciniphila in vivo // Anaerobe. — 2017. — Vol. 43. — P. 56 — 60. doi: 10.1016/j.anaerobe.2016.12.003.
Huang K., Wang M. M., Kulinich A. et al. Biochemical characterisation of the neuraminidase pool of the human gut symbiont Akkermansia muciniphila // Carbohydr. Res. — 2015. — Vol. 415. — P. 60 — 65. doi: 10.1016/j.carres.2015.08.001.
Janssen A. W., Kersten S. Potential mediators linking gut bacteria to metabolic health: a critical view // J. Physiol. — 2017. — Vol. 595. — P. 477 — 487. doi: 10.1113/JP272476.
Kelly J. R., Kennedy P. J., Cryan J. F. et al. Breaking down the barriers: the gut microbiome, intestinal permeability and stressrelated psychiatric disorders // Front Cell. Neurosci. — 2015. — Vol. 9. — P. 392. doi: 10. 3389/fncel.2015.00392.
Kim J., Lee H., An J. et al. Alterations in gut microbiota by statin therapy and possible intermediate effects on hyperglycemia and hyperlipidemia // Front. Microbiol. — 2019. — Vol. 10. — 1947. doi: 10.3389/fmicb.2019. 01947.
Lamichhane S., Sen P., Dickens A. M. et al. Gut metabolome meets microbiome: A methodological perspective to understand the relationship between host and microbe // Methods. — 2018. — Vol. 149. — P. 3 — 12. doi: 10.1016/j.ymeth.2018.04.029.
LealDiaz A. M., Noriega L. G., TorreVillalvazo I. et al. Aguamiel concentrate from Agave salmiana and its extracted saponins attenuated obesity and hepatic steatosis and increased Akkermansia muciniphila in C57BL6 mice // Sci. Rep. — 2016. — Vol. 6. — 34242. doi: 10.1038/srep34242.
Li J., Lin S., Vanhoutte P. M. et al. Akkermansia muciniphila protects against atherosclerosis by preventing metabolic endotoxemiainduced inflammation in apoe/ mice // Circulation. — 2016. — Vol. 133 (24). — P. 2434 — 2446. doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.115.019645.
LopezSiles M., EnrichCapo N., Aldeguer X. et al. Alterations in the abundance and cooccurrence of Akkermansia muciniphila and Faecalibacterium prausnitzii in the colonic mucosa of inflammatory bowel disease subjects // Front. Cell. Infect. Microbiol. — 2018. — Vol. 8. — P. 281. doi: 10.3389/fcimb.2018.00281.
Lukovac S., Belzer C., Pellis L. et al. Differential modulation by Akkermansia muciniphila and Faecalibacterium prausnitzii of host peripheral lipid metabolism and histone acetylation in mouse gut organoids // mBio. — 2014. — Vol. 5 (4). — e01438 — 14. doi: 10.1128/mBio.0143814.
Macchione G., Lopetuso L. R., Ianiro G. et al. Akkermansia muciniphila: key player in metabolic and gastrointestinal disorders // Eur. Rev. Med. Pharmacol. Sci. — 2019. — Vol. 23 (18). — P. 8075 — 8083. doi: 10.26355 / eurrev_201909_19024.
Masumoto S., Terao A., Yamamoto Y. et al. Nonabsorbable apple procyanidins prevent obesity associated with gut microbial and metabolomic changes // Sci. Rep. — 2016. — Vol. 6. — 31208. doi: 10.1038/srep31208.
McHardy I. H., Goudarzi M., Tong M. et al. Integrative analysis of the microbiome and metabolome of the human intestinal mucosal surface reveals exquisite interrelationships // Microbiome. — 2013. — Vol. 1 (1). — P. 17. doi: 10.1186/20492618117.
Meng X., Li S., Li Y. et al. Gut microbiota’s relationship with liver disease and role in hepatoprotection by dietary natural Products and probiotics // Nutrients. — 2018. — Vol. 10. — P. 1457. doi: 10.3390/nu10101457.
Nagpal R., Kumar M., Yadav A. K. et al. Gut microbiota in health and disease: an overview focused on metabolic inflammation // Benef Microbes. — 2016. — Vol. 7. — P. 181 — 194.
Ojo B., ElRassi G. D., Payton M. E. et al. Mango supplementation modulates gut microbial dysbiosis and shortchain fatty acid production independent of body weight reduction in C57BL/6 mice fed a highfat diet // J. Nutr. — 2016. — Vol. 146. — P. 1483 — 1491. doi: 10.3945/jn.115.226688.
Ottman N., Davids M., SuarezDiez M. et al. Genomescale model and omics analysis of metabolic capacities of Akkermansia muciniphila reveal a preferential mucindegrading lifestyle // Appl. Environ Microbiol. — 2017. — Vol. 83. — P. 1 — 15. doi: 10.1128/AEM.0101417.
Ottman N., Geerlings S. Y., Aalvink S. et al. Action and function of Akkermansia muciniphila in microbiome ecology, health and disease // Best Pract. Res. Clin. Gastroenterol. — 2017. — Vol. 31. — P. 637 — 642. doi: 10.1016/j.bpg.2017.10.001.
Ottman N., Reunanen J., Meijerink M. et al. Pililike proteins of Akkermansia muciniphila modulate host immune responses and gut barrier function // PLoS One. — 2017. — Vol. 12. — e0173004. doi: 10.1371/journal.pone.0173004.
Ouwerkerk J. P., Aalvink S., Belzer C., De Vos W. M. Preparation and preservation of viable Akkermansia muciniphila cells for therapeutic interventions // Benef. Microbes. — 2017. — Vol. 8. — P. 163 — 169. doi: 10.3920/BM2016.0096.
Ouwerkerk J. P., van der Ark K. C., Davids M. et al. Adaptation of Akkermansia muciniphila to the oxicanoxic interface of the mucus layer // Appl. Environ Microbiol. — 2016. — Vol. 82. — P. 6983 — 6993. doi: 10.1128/AEM.0164116.
Ozkul C., Yalinay M., Karakan T., Yilmaz G. Determination of certain bacterial groups in gut microbiota and endotoxin levels in patients with nonalcoholic steatohepatitis // Turk. J. Gastroenterol. — 2017. — Vol. 28. — P. 361 — 369.
Plovier H., Everard A., Druart C. et al. A purified membrane protein from Akkermansia muciniphila or the pasteurized bacterium improves metabolism in obese and diabetic mice // Nat. Med. — 2017. — Vol. 23. — P. 107 — 113. doi: 10.1038/nm.4236.
Remely M., Hippe B., Zanner J. et al. Gut microbiota of obese, type 2 diabetic individuals is enriched in Faecalibacterium prausnitzii, Akkermansia muciniphila and Peptostreptococcus anaerobius after weight loss // Endocr Metab. Immune Disord. Drug Targets. — 2016. — Vol. 16. — P. 99 — 106.
Reunanen J., Kainulainen V., Huuskonen L. et al. Akkermansia muciniphila adheres to enterocytes and strengthens the integrity of epithelial cell layer // Appl. Environ Microbiol. — 2015. — Vol. 81 (11). — P. 3655 — 62. doi: 10.1128/AEM.0405014.
Roopchand D. E., Carmody R. N., Kuhn P. et al. Dietary polyphenols promote growth of the gut bacterium Akkermansia muciniphila and attenuate highfat dietinduced metabolic syndrome // Diabetes. — 2015. — Vol. 64 (8). — P. 2847 — 2858.
Schneeberger M., Everard A., GomezValades A. G. et al. Akkermansia muciniphila inversely correlates with the onset of inflammation, altered adipose tissue metabolism and metabolic disorders during obesity in mice // Sci. Rep. — 2015. — Vol. 5. — 16643. doi: 10.1038/ srep16643.
Seregin S. S., Golovchenko N., Schaf B. et al. NLRP6 Protects Il10/ mice from colitis by limiting colonization of Akkermansia muciniphila // Cell. Rep. — 2017. — Vol. 19 (4). — P. 733 — 745. doi: 10.1016/j.celrep.2017.03.080.
Shen F., Zheng R. D., Sun X. Q. et al. Gut microbiota dysbiosis in patients with nonalcoholic fatty liver disease // Hepatobiliary Pancreat. Dis. Int. — 2017. — Vol. 16. — P. 375 — 381.
Shen J., Tong X., Sud N. et al. Lowdensity lipoprotein receptor signaling mediates the triglycerideLowering action of Akkermansia muciniphila in geneticinduced hyperlipidemia // Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. — 2016. — Vol. 36. — P. 1448 — 1456.
Shen W., Shen M., Zhao X. et al. Antiobesity effect of capsaicin in mice fed with highfat diet is associated with an increase in population of the gut bacterium Akkermansia muciniphila // Front. Microbiol. — 2017. — Vol. 8. — P. 272. doi: 10.3389/fmicb.2017.00272.
Shin N. R., Lee J. C., Lee H. Y. et al. An increase in the Akkermansia spp. population induced by metformin treatment improves glucose homeostasis in dietinduced obese mice // Gut. — 2014. — Vol. 63 (5). — P. 727 — 35. doi: 10.1136/gutjnl2012303839.
Singh D. P., Singh J., Boparai R. K. et al. Isomaltooligosaccharides, a prebiotic, functionally augment green tea effects against high fat dietinduced metabolic alterations via preventing gut dysbacteriosis in mice // Pharmacol. Res. — 2017. — Vol. 123. — P. 103 — 113. doi: 10.1016/j.phrs.2017.06.015.
Sommer F., Bäckhed F. The gut microbiota — masters of host development and physiology // Nat. Rev. Microbiol. — 2013. — Vol. 11 (4). — P. 227 — 238. doi: 10.1038/nrmicro2974.
Sonnenburg J. L., Bäckhed F. Dietmicrobiota interactions as moderators of human metabolism // Nature. — 2016. — Vol. 535 (7610). — P. 56 — 64. doi: 10.1038/nature18846.
Stenman L. K., Burcelin R., Lahtinen S. Establishing a causal link between gut microbes, body weight gain and glucose metabolism in humans — towards treatment with probiotics // Benef. Microbes. — 2016. — Vol. 7. — P. 11 — 22. doi: 10.3920/BM2015.0069.
Traykova D., Schneider B., Chojkier M., Buck M. Blood microbiome quantity and the hyperdynamic circulation in decompensated cirrhotic patients // PLoS ONE. — 2017. — Vol. 12. — e0169310. doi: 10.1371/journal.pone.0169310.
Vallianou N. G., Stratigou T., Tsagarakis S. Metformin and gut microbiota: their interactions and their impact on diabetes // Hormones (Athens). — 2019. — Vol. 18 (2). — P. 141 — 144. doi: 10.1007/s4200001900093w.
Van Best N., Jansen P. L., Rensen S. S. The gut microbiota of nonalcoholic fatty liver disease: current methods and their interpretation // Hepatol. Int. — 2015. — Vol. 9. — P. 406 — 415. doi: 10.1007/s1207201596402.
Vandeputte D., Falony G., VieiraSilva S. et al. Stool consistency is strongly associated with gut microbiota richness and composition, enterotypes and bacterial growth rates // Gut. — 2016. — Vol. 65 (1). — P. 57 — 62. doi: 10.1136/gutjnl2015309618.
Van Herreweghen F., De Paepe K., Roume H. et al. Mucin degradation niche as a driver of microbiome composition and Akkermansia muciniphila abundance in a dynamic gut model is donor independent // FEMS Microbiol. Ecol. — 2018. — Vol. 94 (12). — fiy186. doi: 10.1093/femsec/fiy186.
Van Herreweghen F., Van den Abbeele P., De Mulder T. et al. In vitro colonisation of the distal colon by Akkermansia muciniphila is largely mucin and pH dependent // Benef. Microbes. — 2017. — Vol. 8. — P. 81 — 96. doi: 10.3920/BM2016.0013.
Van Passel M. W., Kant R., Zoetendal E. G. et al. The genome of Akkermansia muciniphila, a dedicated intestinal mucin degrader, and its use in exploring intestinal metagenomes // PLoS ONE. — 2011. — Vol. 6. — e16876. doi: 10.1371/journal.pone.0016876.
Verhoog S., Taneri P. E., Roa Diaz Z. M. et al. Dietary factors and modulation of bacteria strains of Akkermansia muciniphila and Faecalibacterium prausnitzii: a systematic review // Nutrients. — 2019. — Vol. 11. — P. 1565. doi: 10.3390/nu11071565.
Wang L. The relative abundance of the mucolytic bacterium Akkermansia muciniphila and Bifidobacterium spp. is lower in feces of children with autism // Appl. Environ. Microbiol. — 2011. — Vol. 77. — P. 6718 — 6721. doi: 10.1128/aem.0521211.
Wang Y., Xu Y., Liu Q. et al. Myosin IIArelated actomyosin contractility mediates oxidative stressinduced neuronal apoptosis // Front. Mol. Neurosci. — 2017. — Vol. 10. — P. 75. doi: 10.3389/fnmol.2017.00075.
Wu W., Lv L., Shi D. et al. Protective effect of Akkermansia muciniphila against immunemediated liver injury in a mouse model // Front. Microbiol. — 2017. — Vol. 8. — P. 1804. doi: 10.3389/fmicb.2017.01804.
WutthiIn M., Cheevadhanarak S., Yasom S. et al. Gut microbiota profiles of treated metabolic syndrome patients and their relationship with metabolic health // Sci. Rep. — 2020. — Vol. 10 (1). — P. 10085. doi: 10.1038/s41598020670783.
Xu Y., Wang N., Tan H. Y. et al. Function of Akkermansia muciniphila in Obesity: Interactions With Lipid Metabolism, Immune Response and Gut Systems // Front Microbiol. — 2020. — Vol. 11. — P. 219. doi: 10.3389/fmicb.2020.00219.
Yassour M., Lim M. Y., Yun H. S. et al. Subclinical detection of gut microbial biomarkers of obesity and type 2 diabetes // Genome Med. — 2016. — Vol. 8. — P. 17. doi: 10.1186/s1307301602716.
Zhang L., Qin Q., Liu M. et al. Akkermansia muciniphila can reduce the damage of gluco/lipotoxicity, oxidative stress and inflammation, and normalize intestine microbiota in streptozotocininduced diabetic rats // Pathog Dis. — 2018. — Vol. 76 (4). doi: 10.1093/femspd/fty028.
Zhang S., Rasai A., Wang Y. et al. The Stem cell factor Sox2 is a positive timer of oligodendrocyte development in the postnatal murine spinal cord // Mol. Neurobiol. — 2018. — Vol. 55. — P. 9001 — 9015. doi: 10.1007/ s1203501810357.
Zhang T., Li Q., Cheng L. et al. Akkermansia muciniphila is a promising probiotic // Microb Biotechnol. — 2019. — Vol. 12 (6). — P. 1109 — 1125. doi: 10.1111/17517915.13410.
Zhao S., Liu W., Wang J. et al. Akkermansia muciniphila improves metabolic profiles by reducing inflammation in chow dietfed mice // J. Mol. Endocrinol. — 2017. — Vol. 58 (1). — P. 1 — 14.
